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清华生物制造中心丨基于3D打印的体外肺泡模型的构建与应用

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基于3D打印技术的体外肺泡模型的构建与应用

                             
引用格式:                              
                             
Tiankun Liu, Chang Zhou, Yongchun Shao, Zhuo Xiong, Ding Weng, Yuan Pang, Wei Sun. Construction and Application of in vitro Alveolar Models Based on 3D Printing Technology. Chinese Journal of Mechanical Engineering: Additive Manufacturing Frontiers, Volume 1, Issue 2, 2022.                              
下载链接:                              
https://doi.org/10.1016/j.cjmeam.2022.100025                              
                             



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研究背景及目的

体外仿生肺模型在肺部疾病机制研究、新型药物筛选及冠状病毒防治上都具有广阔的应用前景。目前,肺模型的构建策略主要包括:动物模型、二维细胞培养、肺芯片模型和肺类器官模型。虽然已有模型可一定程度模拟肺部细胞组成和生理活动,但在肺泡尺寸、囊状形态的构建和细胞组成的复杂度上仍然与体内有较大差异。针对上述问题,本研究提出一种基于可降解水凝胶微球3D打印构建仿生肺泡模型的方法。


图1 肺泡模型的设计理念和构建过:(a) 人类肺泡组织示意图, (b) 基于新型打印技术的模型构建流程

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论文亮点

1.开发了基于交变滞惯力3D打印可降解水凝胶微球工艺;

2.基于逐层微囊和核心液化,构建了囊壳结构,实现了类肺泡的200–250 μm囊状结构构建;

3.三种细胞在表面改性的囊壳状结构上显示出较高的接种率与增殖性,实现含多细胞组成的仿生肺泡模型构建;

4.3D打印的体外肺泡模型给出明显毒物(戊二醛)响应。


图2 海藻酸钠微球的囊壳化和核心液化: (a) 逐层微囊化及核心液化的路线,(b) 每一步微囊化处理后的结构形态,比例尺:200 μm, (c) 囊壳化结构,比例尺:50 μm, (d) 液化核心中红色荧光颗粒的位移


图3 多细胞在微囊结构上的粘附和存活,比例尺:200μm


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试验方法

本研究通过基于交变滞惯力驱动的新型3D打印方法构建海藻酸钠微球。该方法避免了传统微滴制备过程中存在的高温、高电压和高剪切力条件,具有良好的生物相容性。配合定制的打印喷头和可调节的打印参数,可实现微球直径的可控变化,具有良好的可控性。随后,通过逐层微囊和核心液化的方式,先后在微球上形成了海藻酸钠-壳聚糖的壳层结构和液化的核心结构,获得了类体内尺寸和形状的囊状肺泡结构。最后通过向囊状结构表面接种腺癌人肺泡基底上皮细胞A549细胞(常用于肺泡模型构建与肺毒性检测)、3T3成纤维细胞和人脐静脉血管内皮细胞,形成多细胞仿生肺泡模型,并应用于戊二醛的毒物检测分析。


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结果

基于交变滞惯力驱动的3D打印技术实现了海藻酸钠微滴的稳定打印。打印过程中发现,随着打印喷头口径的增加,获得的微滴尺寸也逐渐增大。并确定使用口径180 μm的打印喷头时,可获得直径230.927 ± 19.090 μm的水凝胶微球,与体内肺泡真实尺寸接近。


逐层微囊和核心液化的方式可形成稳定的囊状结构。基于海藻酸钠和壳聚糖的电性吸附,在微球表面逐层交替形成多层壳结构。进一步使用柠檬酸钠溶液浸泡,使中心的微球液化获得具有核心液化的微胶囊结构。预混在微球中的红色荧光颗粒在核心液化处理后产生了明显位移,证明了海藻酸钠微球的成功液化,形成了有流动性的核心和厚度为4.152 ± 0.388 μm的囊壳结构。之后对囊状水凝胶微胶囊进行表面处理,发现预混合胶原的方法可增强微胶囊表面的细胞粘附。


在优化的表面处理方式下,接种多细胞并进行共培养,最终形成了仿生囊状肺泡结构,活死染色结果也显示出结构上的细胞保持了较高的存活率。最后,基于仿生肺泡模型进行戊二醛毒性测试, 获得LD50值为387.37 ng/ml,符合美国环保局提供的参考范围。


图4 基于肺泡模型的戊二醛毒性反应曲线

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结论

本研究提出基于可降解水凝胶微球构建肺泡模型的研究策略,通过交变滞惯力驱动的3D打印技术获得了直径约230 μm的水凝胶微球,确定了适于细胞粘附的表面处理方案与共培养条件;进一步通过逐层凝聚技术和核心液化分别获得表面囊壳和液化的核心结构,共同构成水凝胶微胶囊结构,并通过优化表面处理方案,实现了多种细胞在胶囊上的接种与共培养,成功构建了含多细胞组成、具有可比拟真实肺泡尺寸(直径约230 μm)囊状结构、内皮化的体外三维肺泡模型;最后基于构建的肺泡模型进行了相关生物学评价及毒物测试,结果显示多种细胞在打印构建的肺泡模型中保持了较高的细胞活性,使用戊二醛进行的毒性测试证明了该三维肺泡模型可用于毒物评价。


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前景与应用

未来将进一步打印组装的单个肺泡模型,有望实现更大尺度的体外肺组织模型其气血屏障构建。在模型应用上,除液体毒物外,可将进一步开展针对有毒气体、有害液体、颗粒物和气溶胶的毒物评价,并进一步探究构建模型的相关生物学表达,开展更深层的毒理学、病理学、药理学研究。



                             

团队带头人介绍

                             
                             
孙伟,现任清华大学机械工程系国家特聘教授;美国Drexel大学机械工程与力学系Albert Soffa讲席教授;清华大学“生物制造与体外生命系统工程”教育部111交叉创新引智基地主任,清华大学机械系生物制造中心主任。研究领域包括三维生物打印,生物制造,组织工程,生物工程,增材制造,先进制造等。其研究得到中国自然科学基金委重点项目基金,科技部863项目,国家重大新药研发专项,教育部,美国国家科学基金会(NSF)等多项经费资助。孙伟教授现任国际生物制造(Biofabrication)杂志主编;中国机械工程学会生物制造专业委员会主任委员;中国生物工程学会组织工程及再生医学专业委员会副主任委员;国际生物制造学会创任主席(Founding President:2010-2014);中国生物材料学会生物材料先进制专业委员会创任主任委员(2014-2019)。                              

                             

作者介绍

                             
                             
庞媛(本文通讯作者),清华大学机械工程系副研究员,2013年博士毕业于日本东京大学,获工学系研究科生物工程专业博士,并曾于哈佛医学院、麻省综合医院访问交流;2013-2016年于东京大学生产技术研究所从事博士后研究;2016年12月加入清华大学机械系,现任中国环境诱变剂学会毒性测试与替代方法专业委员会委员、中国机械工程学会微纳制造分会委员会委员。长期从事生物制造、组织工程、药物缓释等领域研究。作为负责人主持国家自然科学基金面上等国家级项目3项、北京市自然科学基金面上等项目2项、日本科学振兴机构交流项目1项、清华大学校内自主科研3项。并作为主研人参与国家重点研发计划、军委科技委重点专项、国家863、新药创制重大专项等多项国家级项目。近五年以通讯和第一作者在Gut、Biofabrication、Acta Biomaterialia等国内外权威刊物上发表相关研究论文25篇,研究工作多次受国际新闻采访报道,并获评2020年 Lush Prize年轻科学家奖(亚洲唯一获奖人)。代表性成果包括面向临床恶性肿瘤治疗的体外模型及构建技术、面向移植需求的血管化类器官构建、3D打印干细胞模型用于药/毒物评价等。                              

                             
                             
                             
翁鼎(本文通讯作者,男,清华大学机械工程系摩擦学国家重点实验室助理研究员,国家111计划“生物制造与体外生命系统工程”交叉学科创新引智基地成员。2006年本科毕业于清华大学基础科学班数学物理方向,2012年于加利福尼亚大学洛杉矶分校获得化工系博士学位,后进入哈佛大学医学院开展博士后工作至2016年12月回国任教。科研工作从材料—材料、材料—生物的界面和相互作用出发,围绕纳米材料、高分子材料、水凝胶技术和干细胞再生医学的展开研究。已发表章节著作2部,SCI文章37篇,严格他引次数超过1220,并为Langmuir等多个国际知名刊物担任审稿专家。以项目负责人承担国家自然科学基金青年面上1项,参与科研项目19项。                              
                             

团队研究方向

生物/细胞3D打印先进制造装备与技术的研发、生物墨水研发及体外生物功能结构体构建、体内病损组织修复与再生医学研究、基于干细胞及组织/器官芯片的体外微生理系统模型构建与药物研究等。

近年团队发表文章

[1]Karn,Changsorn, H. Matsumoto, HF. Hong, Y. Pang, W. Sun, Y. Sakai. 3D perfusion culture of mouse insulinoma in macroporous scaffolds enhanced insulin production response, The Inter. J. of Artificial Organs, December 2020.

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[15]Y. Pang, S. Sutoko&, ZT. Wang&, Y. Horimoto&, K. Montagne, I. Horiguchi, M. Shinohara, D. Mathiue, T. Niino, Y. Sakai, Organization of liver organoids using Raschig ring-like micro-scaffolds and triple co-culture: Toward modular assembly-based scalable liver tissue engineering, Medical Engineering and physics, 2020(76): 69-78

[16]Huayu Yang, Lejia Sun, Yuan Pang, Dandan Hu, Haifeng Xu, Shuangshuang Mao, Wenbo Peng, Yanan Wang, Yiyao Xu, Yongchang Zheng, Shunda Du, Haitao Zhao, Tianyi Chi, Xin Lu, Xinting Sang, Shouxian Zhong, Xin Wang, Hongbing Zhang, Pengyu Huang, Wei Sun, Yilei Ma, Three-dimensional Bioprinted Hepatorganoids Prolongs the Survival of Mice with Liver Failure ,GUT, 2020, 0: 1–8.

[17]Xie, Feihu, Sun, Lejia, Pang, Pang, Xu, Gang, Jin, Bao, Xu, Haifeng, Lu, Xin, Xu, Yiyao, Du, Shunda, Wang, Yanan, Feng, Shi, Sang, Xinting, Zhong, Shouxian, Wang, Xin, Sun, Wei, Zhao, Haitao, Zhang, Hongbing, Yang, Huayu, Huang, Pengyu, Mao, Yilei, Three-dimensional bio-printeing of primary human hepatocellular carcinoma for personalized medicine, Biomaterials, 265 (2021), 120416.

来源:机械工程学报

                              


来源:增材制造硕博联盟
MechanicalAdditiveMarc航空航天增材芯片材料仿生试验
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首次发布时间:2023-03-19
最近编辑:1年前
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